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Pipetas Serologicas Esteriles 1ml

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36 disponibles


  • Constructed of highly transparent prime virgin polystyrene
  • Available in 1ml, 2ml, 5ml, 10ml, 25ml, 50ml volumes
  • Each volume labeled with a different color for ease of use
  • Ascending anddescending graduations
  • Filter at the top of each pipette prevents damage to pipettors
  • Non-pyrogenic, non-cytotoxic
  • DNase & RNase free, human DNA free

SKU: 07-5001

Caja 200 Unds

25,00

36 disponibles

Pipetas Serologicas Esteriles

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Pipetas Serologicas Esteriles

Pipetas Serologicas Esteriles Envase Unitario: Los microorganismos están en todas partes – en el aire, el suelo, y el cuerpo humano, así como en las superficies inanimadas, como bancos de laboratorio y teclados de computadoras. La ubicuidad de los microorganismos generan un suministro abundante de posibles contaminantes en un laboratorio. Para asegurar el éxito experimental, el número de contaminantes sobre las superficies del equipo y el trabajo debe ser minimizado. Común entre los muchos experimentos en microbiología son las técnicas que implican la medición y la transferencia de los cultivos que contienen células bacterianas o de partículas virales. Para hacerlo sin ponerse en contacto con superficies no estériles, o la contaminación de los medios de comunicación estériles requiere (1) la preparación de un espacio de trabajo estéril, (2), precisamente, de ajuste y la lectura precisa de los instrumentos para la transferencia de aséptico de líquidos, y (3) correctamente la manipulación de instrumentos, frascos, botellas y culturas tubos dentro de un campo estéril. El aprendizaje de estos procedimientos requiere entrenamiento y práctica. En un primer momento, las acciones deben ser lenta, deliberada y controlada, con el objetivo de ser asépticos para technique para convertirse en una segunda naturaleza, cuando trabajaba en el banco. A continuación les presentamos los pasos a seguir para la medición de volúmenes con pipetas serológicas y Micropipetas dentro de un campo estéril, creado por un mechero Bunsen. Volúmenes desde microlitros (l) a mililitros (ml), dependiendo del instrumento utilizado. Líquidos comúnmente transferidos incluyen caldo estéril o soluciones químicas, así como cultivos de bacterias y las poblaciones de fagos. Siguiendo estos procedimientos, los estudiantes deben ser capaces de:

  • El trabajo en el campo estéril creado por la llama del mechero Bunsen.
  • Utilizar pipetas serológicas, sin comprometer la esterilidad del instrumento.
  • Aspirar líquidos con Pipetas Serologicas Esteriles, precisamente la lectura de volúmenes calibrados alineando el menisco formado por el líquido a las marcas de graduación en la pipeta.
  • Mantenga las botellas de cultivo, frascos, tubos y sus respectivas tapas estériles durante la transferencia de líquidos.
  • Identificar las diferentes aplicaciones de plástico frente al vidrio de Pipetas Serologicas Esteriles.
  • Las limitaciones del Estado de precisión para Micropipetas.
  • Precisamente, y establecer con precisión los volúmenes de Micropipetas.
  • Sepa cómo utilizar correctamente la primera parada y el segundo en una micropipeta para aspirar y transferir volúmenes correctos.
2. Transferencia de líquidos con pipetas serológicas
  1. Pipetas Serologicas Esteriles vienen en muchos tamaños y opciones: de plástico o de vidrio, desechables o reutilizables, conectarse o desconectarse. Estos están calibrados para proporcionar volúmenes que van desde un 0,1 ml a 25 ml.
    • Los tamaños comunes para las Pipetas Serologicas Esteriles son 5 ml, 10 ml y 25 ml y se debe utilizar para asépticas transferencias líquidas de 0,1 ml o más (panel A de la Figura 2). También hay grandes pipetas serológicas que pueden ofrecer volúmenes de hasta 100 ml, sin embargo, el foco de este protocolo es de los más comunes, más pequeñas del tamaño de las pipetas.
    • Pre-esterilizados con pipetas de un tapón de algodón se necesitan para la microbiología y los experimentos de cultivo de tejidos. El enchufe no debe ser retirado de la ap de la pipeta; que está diseñado para funcionar como una barrera para el llenado excesivo de la pipeta.
    • Diferentes aplicaciones requieren pipetas de plástico frente al vidrio serológicas. El vidrio se necesitan para los disolventes orgánicos. Cualquiera puede ser utilizado cuando se realiza BSL-1 experimentos sobre la parte superior del banco de laboratorio. Plásticos sólo pueden usarse cuando se trabaja en un gabinete de bioseguridad BSL-2 con los organismos en un mechero Bunsen no se pueden utilizar. También se recomienda que el plástico se utiliza para aplicaciones que implican transferencia de agar fundido.
    • Pipetas serológicas son de dos tipos: TC (“contener”) o TD (“entregar”). Pipetas TC entregar todo el volumen, incluyendo la punta, y debe ser “apagado” o se lava para obtener el volumen especificado. TD pipetas están calibradas para dejar un poquito en la punta que no fuera entregado. Asegúrese de revisar la etiqueta en el cuerpo de la pipeta en la parte superior para determinar de qué tipo es (Figura 3). Los más utilizados son las pipetas TD, que son mercadosked con dos timbres en la parte superior.
  2. Tome una pipeta serológica de plástico estéril (también llamado una pipeta volumétrica) y retirar con cuidado la cubierta de papel en el extremo con el tapón de algodón al pelar lejos como la piel de un plátano – no retire el manga entero, la protección de la punta de la pipeta que entrarán en contacto con el líquido a ser transferido. Toque solamente la parte superior de la pipeta (por encima de las marcas de graduación) con las manos.
    • Nunca se meta en una solución estéril con una pipeta usada, incluso si el cuidado se ha tenido mucho para mantenerla estéril.
    • Pipetas de vidrio serológicos suelen almacenarse en recipientes de metal (panel B de la Figura 2). Afloje la tapa de la lata con cuidado quitar el tapón, y la llama de los extremos abiertos de la tapa y el frasco. Colocar la tapa hacia abajo, sobre su lado, en el banco desinfectada. Extraer una pipeta del envase cargándola de forma horizontal y suavemente temblaban tanto las tapas de uno o dos pipetastes sobresalir aproximadamente una pulgada y puede ser comprendido con facilidad. Establecer el bote en su lado y quitar una pipeta, pero tenga cuidado de no tocar las pipetas de otros en el contenedor. No toque la punta de la parte inferior de la pipeta con las manos, y evitar el contacto de la punta con otras superficies no estériles.
  3. Fijar una ayuda pipeta tal como una bombilla, bomba o pistola al extremo superior de la pipeta serológica. Quitar la funda de papel a partir de la pipeta de plástico. Mantenga la ayuda de la pipeta en la mano derecha.
    • Si se utiliza una pipeta de vidrio, pasar el tercio inferior de la pipeta a través del cono azul de la llama del mechero Bunsen durante 1-3 segundos. Girar la pipeta 180 ° a medida que pasa a través de la llama. Pipetas y tubos de plástico no puede ser flameado.
    • Si la mano izquierda, sostenga la ayuda de la pipeta en la mano izquierda y llevar a cabo las manipulaciones posteriores de botellas y tubos de cultivo con la mano derecha.
    • La contaminación tiende a ocurrir con pipetas de plástico, cuando la retirada de la última incHES de la pipeta de la manga porque la punta estéril entra en contacto con la parte del manguito tocado por sus manos.
  4. Retire la tapa de la botella que contiene los medios de comunicación estériles. No coloque la tapa en la mesa de laboratorio, sino sostenerlo entre el dedo anular y la palma de la mano derecha, mientras que la manipulación de la ayuda de la pipeta con el dedo pulgar, índice y el dedo medio de la misma mano (Figura 4). Sosteniendo la botella en un ángulo de 45 °, pasar el borde de la botella a través de la llama del quemador Bunsen, creando un campo estéril alrededor de la botella abierta.
    • Aunque es mejor evitar, si hay que poner la tapa hacia abajo, colóquelo boca abajo sobre una superficie desinfectada. Con una tapa que está hacia arriba, existe una mayor posibilidad de contaminación de los movimientos de los objetos o las manos, creando corrientes de aire que causan los microorganismos y partículas de polvo a descender a la superficie interior de la tapa.
    • El propósito de la llama no es para esterilizar pero para calentar la abertura Of de la botella y crear corrientes de aire de convección hacia arriba y lejos de la abertura (es decir, corriente ascendente). El aire caliente, el aumento de ayuda a evitar que las partículas de polvo y otros contaminantes entren en el frasco.
    • Mantener el envase estéril abierto para el menor tiempo posible. Es importante mantener los puntos de entrada de microorganismos en el aire a un mínimo durante todo el procedimiento.
    • Evite toser, estornudar, hablar, y el movimiento involuntario, mientras que otros recipientes estériles están abiertas.
    • Nunca pase las manos y los dedos sobre la parte superior de un campo estéril (es decir, abrir botellas o frascos, el interior de los tubos y tapas de botellas), una vez que han pasado por la llama del mechero Bunsen.
    • Siempre se debe trabajar con una llama abierta al abrir botellas o tubos estériles. Nunca tienen más de un tubo, botella o frasco abierto en el banco a la vez. Flaming debe hacerse inmediatamente después de la apertura y el cierre justo antes de tubos, botellas y frascos.
  5. Coloque la Pipetas Serologicas Esteriles  en el frasco que contiene el material estéril y aspirar o extraer la muestra de forma aséptica, de la botella. Utilice la ayuda pipeta para controlar el flujo de la muestra en la pipeta. Precisamente leer el volumen en la pipeta, alineando el menisco formado en la parte superior de la columna de líquido a las marcas de graduación en la pipeta calibrada (Figura 5).
    • NO BOCA PIPETA! Utilice siempre una ayuda pipeta (bomba, bombilla, o una pistola).
    • Prestar atención a la secuencia de números cuando la determinación del volumen aspirado. Los números se pueden imprimir de punta a la inversa superior, o viceversa, o muchas veces en ambas direcciones.
    • Al leer el volumen, siempre mantenga el pipeta en posición vertical, perpendicular al suelo, y ver el menisco líquido de muertos en la altura de los ojos.
    • Pipetas serológicas son tan precisos como el incremento más pequeño marcado, que suele ser de 0,1 ml 5 ml y 10 ml y pipetas de 0,2 ml por 25 ml pipetas. Yof mayor precisión que se necesita, una pipeta serológica puede ser utilizado en combinación con una micropipeta.
  6. Pase el borde de la botella a través de la llama del quemador Bunsen, una vez más, a continuación, colocar la tapa en la botella. Establecer la botella a un lado los medios de comunicación.
    • No se quema con el mechero Bunsen en una carrera para cerrar la botella.
  7. Mantenga un tubo de ensayo o frasco en la mano izquierda. Retire y mantenga la tapa como se describe en el paso # 4. Crear un campo estéril por flameado el borde del tubo o frasco en el mechero de Bunsen.
  8. Distribuir los medios de comunicación en la pipeta en el tubo o frasco. Controlar el flujo de la muestra para que no salpique fuera del tubo o frasco.
    • Volúmenes puede medirse de manera que todo el volumen se entrega y la pipeta drena por completo, o un volumen específico se consigue haciendo una entrega de punto a punto (un volumen marcado a otra).
  9. Pase el borde del tubo o frasco a través de la quemadura Bunsener la llama una vez más, a continuación, coloque la tapa. Coloque el tubo o frasco a un lado. Quitar la ayuda de pipeta y descartar la pipeta en el recipiente de residuos adecuado.
    • Plástico pipetas serológicas son desechables, mientras vidrio pipetas serológicas pueden ser esterilizados y utilizarse de nuevo. La eliminación adecuada de pipetas de plástico requiere ser colocado en un contenedor de objetos punzantes designado (caja rígida alineó con el bolso plástico de desecho), mientras que inicialmente pipetas de vidrio debe ser sumergido en un recipiente con una solución de lejía al 10% para la desinfección de las superficies interiores y exteriores. Entonces las pipetas de vidrio debe ser lavado a fondo con detergente de laboratorio, se enjuagó con agua destilada, y se esterilizó en un autoclave.
  10. Estos mismos pasos se deben seguir cuando la inoculación de los medios de comunicación con un cultivo bacteriano o stock de fago o cuando se realizan diluciones seriadas.
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